源智细胞低电压基因电转仪
——高效、经济的细胞电穿孔解决方案。
一、技术背景
电穿孔(Electroporation，EP)技术出现于20世纪80年代中期。电穿孔是一个物理过程，细胞在高电压场强的作用下，细胞膜发生暂时的重新排列，结果使细胞膜具有临时性的大分子可通透性，可从周围环境中摄入包括核酸、蛋白质、碳水化合物一类的大分子以及其他一些小分子。
与传统的瞬转方法：原生质体融合法，磷酸钙与DNA或重组噬菌体共沉淀法，DEAE-葡聚糖法，脂质体法方法相比，电穿孔技术具有简单易行、重复性好、效率较高、电参数容易控制和调整、作用机理相对比较清楚等优点，已成为生物医学研究的核心工具。
然而，商用电转仪的高成本限制了其广泛应用。
二、产品创新
核心优势：
- 操作简便：一体化设计，参数（脉冲电压/宽度/次数）可精准调控。
- 兼容性强：支持多种哺乳动物细胞（推荐细胞量：1×10?–1×10?/杯）。
三、实验操作流程
1. 试剂与耗材
- 细胞培养基（DMEM/1640）、FBS、0.25%胰蛋白酶、PBS
-关键试剂：CellEasy 电转缓冲液（自主研发）
2. 实验步骤
1. 细胞预处理
- 消化细胞 → PBS洗涤 → 离心（1000rpm, 5min）→ 电转缓冲液重悬（85μL/杯）。
2. 质粒加入
- 细胞悬液中加入8.5μg质粒（终浓度10μg/mL），轻柔混匀。
3. 电转杯操作
- 毛细管枪头吸取85μL样本注入电转杯（避免气泡）→ 插入仪器卡槽。
4. 电参数设置
- 设置脉冲参数 → 启动电转（仪器自动完成充电-放电）。
5. 后处理
- 电转后立即加入少量培养基 → 转移至含2mL完全培养基的6孔板 → 37℃培养24-48h。
四、性能验证
- 转染效率：48h内可清晰观测荧光蛋白表达
- 细胞存活率：电转后24h细胞状态良好，存活率符合实验要求。
五、应用场景
- 基因过表达/敲除、CRISPR-Cas9编辑、蛋白功能研究等瞬转实验。
- 适用于科研院所、高校实验室及经费有限的研发团队。
结论：源智细胞电转仪拥有稳定的性能，显著降低了电穿孔技术的使用门槛，为科研工作者提供高性价比的解决方案。
